一、準備工作
準備工作對開展細胞培養異常重要，工作量也較大，應給予足夠的重視，準備工作中某一環節的疏忽可導致實驗失敗或無法進行 。準備工作的內容包括器皿的清洗、干燥與消毒，培養基與其他試劑的配制、分裝及滅菌，無菌室或超凈臺的清潔與消毒，培養箱及其他儀器的檢查與調試 。
二、取材
在無菌環境下從機體取出某種組織細胞（視實驗目的而定），經過一定的處理（如消化分散細胞、分離等）后接入培養器皿中，這一過程稱為取材 。如是細胞株的擴大培養則無取材這一過程 。機體取出的組織細胞的首次培養稱為原代培養 。
理論上講各種動物和人體內的所有組織都可以用于培養，實際上幼體組織（尤其是胚胎組織）比成年個體的組織容易培養，分化程度低的組織比分化高的容易培養，腫瘤組織比正常組織容易培養 。
取材后應立即處理，盡快培養，因故不能馬上培養時，可將組織塊切成黃豆般大的小塊，置4℃的培養液中保存 。取組織時應嚴格保持無菌，同時也要避免接觸其他的有害物質 。取病理組織和皮膚及消化道上皮細胞時容易帶菌，為減少污染可用抗菌素處理 。
三、培養
將取得的組織細胞接入培養瓶或培養板中的過程稱為培養 。如系組織塊培養，則直接將組織塊接入培養器皿底部，幾個小時后組織塊可貼牢在底部，再加入培養基 。如系細胞培養，一般應在接入培養器皿之前進行細胞計數，按要求以一定的量（以每毫升細胞數表示）接入培養器皿并直接加入培養基 。細胞進入培養器皿后，立即放入培養箱中，使細胞盡早進入生長狀態 。
正在培養中的細胞應每隔一定時間觀察一次，觀察的內容包括細胞是否生長良好，形態是否正常，有無污染，培養基的PH是否太酸或太堿（由酚紅指示劑指示），此外對培養溫度和CO2濃度也要定時檢查 。一般原代培養進入培養后有一段潛伏期（數小時到數十天不等），在潛伏期細胞一般不分裂，但可貼壁和游走 。過了潛伏期后細胞進入旺盛的分裂生長期 。
細胞長滿瓶底后要進行傳代培養，將一瓶中的細胞消化懸浮后分至兩到三瓶繼續培養 。每傳代一次稱為“一代” 。二倍體細胞一般只能傳幾十代，而轉化細胞系或細胞株則可無限地傳代下去 。轉化細胞可能具有惡性性質，也可能僅有不死性（Immortality）而無惡性 。培養正在生長中的細胞是進行各種生物醫學實驗的良好材料 。
四、凍存及復蘇
為了保存細胞，特別是不易獲得的突變型細胞或細胞株，要將細胞凍存 。凍存的溫度一般用液氮的溫度—－196℃，將細胞收集至凍存管中加入含保護劑（一般為二甲亞砜或甘油）的培養基，以一定的冷卻速度凍存，最終保存于液氮中 。
在極低的溫度下，細胞保存的時間幾乎是無限的 。復蘇一般采用快融方法，即從液氮中取出凍存管后，立即放入37℃水中，使之在一分鐘內迅速融解 。然后將細胞轉入培養器皿中進行培養 。凍存過程中保護劑的選用、細胞密度、降溫速度及復蘇時溫度、融化速度等都對細胞活力有影響 。
擴展資料：
進入細胞間開始細胞培養時，注意事項：
①確定所有的細胞操作用的溶液和耗材都已經消毒并檢測沒有問題，不確定的溶液和耗材請勿使用，除非特殊情況，不要借用別人的溶液 。
②確定衣服的袖口已經卷起或者白大褂的袖口已經扎緊 。
③確定酒精燈內的酒精量，需要的話及時進行補充 。
④確定所有需要用到的溶液和耗材都放在伸手可及的位置 。為了方便單手開啟瓶蓋，實驗開始前可以把所有瓶蓋旋松 。
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